Information

1.13: Einführung in die Pflanzenmorphologie - Biologie

1.13: Einführung in die Pflanzenmorphologie - Biologie



We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Lernziele

  • Beschreiben Sie die morphologischen Eigenschaften von krautigen und holzigen Stängeln.

Die Pflanzenidentifikation hängt von der Kenntnis der Taxonomie und dem Verständnis der Stamm-, Blatt-, Knospen-, Blüten- und Fruchtmorphologie ab. Morphologie ist das griechische Wort für „das Studium der Form“ und Pflanzenmorphologie ist das Studium der äußeren Pflanzenstrukturen und -formen. Während die ursprüngliche botanische Ressource, Art plantarum wurde 1753 von Carolus Linnaeus veröffentlicht, eine der umfassendsten Referenzen, die derzeit zur Pflanzenmorphologie verfügbar ist, ist Huxley, A. (Hrsg.) Das neue Wörterbuch der Gartenbaugesellschaft der Royal Horticultural Society. London, Macmillan Press, 1992.

Eine fundierte Kenntnis morphologischer Deskriptoren zur Pflanzenidentifikation ermöglicht die Verwendung von dichotomen Schlüsseln sowie von Herbariumproben und digitalen Datenbanken. Ein Herbarium ist eine Sammlung von gepressten und getrockneten Pflanzen, die zu Forschungs- und Pflanzenbestimmungszwecken systematisch zusammengestellt wird. Informationen zum Verfahren zur Erstellung von Herbariumproben finden Sie unter diesem Link zu Herbarium: Pflanzen pressen [Neue Registerkarte][1]

Ein YouTube-Element wurde aus dieser Textversion ausgeschlossen. Sie können es hier online einsehen: https://kpu.pressbooks.pub/plant-identification/?p=131

Herbarium: Pflanzen pressen https://youtu.be/USltmLxNt80

Ein Beispiel für eine institutionelle Herbarie finden Sie unter diesem Link zum Beaty Biodiversity Museum der University of British Columbia [Neue Registerkarte].[2]

Digitale Datenbanken und Apps verwenden normalerweise die Morphologie von Stängeln, Blättern, Blüten und Früchten, um unbekannte Pflanzen zu identifizieren . Einige regionale Datenbanken sind unter diesen Links zu den Pflanzendatenbank der Polytechnischen Universität Kwantlen [Neue Registerkarte][3], Landschaftspflanzen der Oregon State University [Neue Registerkarte][4], und University of British Columbia E-Flora BC [Neue Registerkarte][5].

Stammmorphologie

Eine morphologische Beschreibung beginnt in der Regel mit der Struktur einer Pflanze. Pflanzenstängel mit Gefäßgewebe unterstützen Blätter und Fortpflanzungsstrukturen wie Blüten. Je nach Pflanzenart können die Stängel holzig oder krautig und im Querschnitt massiv oder hohl sein.

Krautige (nicht holzige) Stängel mit festen oder hohlen Stängeln sind typisch für Forbs (Eudikotylen), Gräser und grasähnliche Pflanzen, die Binsen und Seggen (Monokotyledonen) genannt werden. Die Stängel sind im Allgemeinen mit einem weichen, schwammartigen Gewebe namens Mark gefüllt, das Nährstoffe speichert und transportiert. Der Halm (Stamm) einer Graspflanze (Poa spp.) ist nur an den gegliederten Knoten hohl mit Mark. Die Basis des Blattes umkreist den Stängel und bildet eine Reihe von überlappenden Hüllen. Seggen (Carex spp.), unterscheiden sich von Gräsern und Binsen dadurch, dass die Stängel an der Basis im Querschnitt dreieckig (V-förmig) sind („Seggen haben Kanten“), ein festes Mark haben und nicht gegliedert sind. Binsen unterscheiden sich von Gräsern darin, dass die Stängel nicht verbunden sind (keine Knoten) und normalerweise mit Mark gefüllt sind. Einige Eile-Gattungen, wie z Luzula spp. kann sehr grasähnlich mit Blattspreite aussehen, wenn sie drin ist Juncus spp. die Blätter können bis auf eine abgerundete Hülle reduziert sein. Beschreibungen der morphologischen Merkmale finden Sie unter diesem Link zu Gräser, Seggen und Binsen [Neue Registerkarte][6].

Im Gegensatz zu krautigen Stängeln, die am Ende der Vegetationsperiode absterben, sind verholzende Stängel dauerhafte Strukturen, die jedes Jahr in Länge und Umfang (Durchmesser) wachsen und Rinde als Schutzhülle produzieren. Die in Abbildung 13.1 dargestellten allgemeinen Merkmale des verholzten Stammes sind charakteristisch für eine bestimmte Pflanzenart.

Abbildung 13.1 Äußere Merkmale eines holzigen Stammes

Form, Größe und Anordnung von Knospen und Lentizellen (kleine Öffnungen in der äußeren Rinde, die den Gasaustausch ermöglichen) sind bei Bäumen und Sträuchern oft erkennbar, wie in Abbildung 13.2 und Abbildung 13.3 gezeigt. Die Dicke, Textur, das Muster und die Farbe der Rinde vieler Gehölze sind sowohl ein charakteristisches Merkmal für die Identifizierung als auch ein attraktives Merkmal für die Landschaftsnutzung.

Abbildung 13.2 Prunus-Knospen

Abbildung 13.3 Prunusrinde und Lentizellen

Beispiele für die Morphologie von krautigen Stängeln und holzigen Stängeln und Knospen finden Sie unter diesem Link zu Vorbauten – Externe KPU.ca/Hort [Neue Registerkarte][7].

Stammmodifikationen umfassen unterirdische, oberirdische und Luftstrukturen, die für verschiedene Pflanzenarten charakteristisch sind. Unterirdische Strukturen zur Verbreitung und Lagerung von Lebensmitteln umfassen Rhizome, Knollen, Knollen und Zwiebeln. Ausläufer, Ausläufer, Saugnäpfe und Versätze, die fast parallel oder knapp über dem Boden wachsen, ermöglichen die Pflanzenausbreitung. Zu den Modifikationen an der Luft gehören Stammranken und Dornen zum Klettern und zum Schutz. Unter xerischen (trockenen) Bedingungen kann der Stängel die Photosynthese übernehmen, um den Wasserverlust aus den Blättern zu reduzieren (Kaktus spp.). Beispiele für verschiedene Arten von Vorbaumodifikationen finden Sie unter diesem Link zu Modifikationen – Stamm KPU.ca/Hort [Neue Registerkarte][8].

Richtig oder falsch Suchen Sie die verfügbaren Pflanzennamen unter diesem Link zum KPU-Anlagendatenbank [Neue Registerkarte][9]

Ein interaktives oder mediales Element wurde von dieser Textversion ausgeschlossen. Sie können es hier online einsehen:
kpu.pressbooks.pub/plant-identification/?p=131

Ein interaktives oder mediales Element wurde von dieser Textversion ausgeschlossen. Sie können es hier online einsehen:
kpu.pressbooks.pub/plant-identification/?p=131



Die Pflanzenmorphologie beschäftigt sich mit der Pflanzenform, einschließlich ihrer Entwicklung und Evolution. Es kann im engeren Sinne so definiert werden, dass es sich nur auf die äußere Form bezieht, im Gegensatz zur Anatomie, die sich auf die innere Form bezieht. Pflanzenmorphologie kann aber auch in einem weiten Sinne definiert werden, der sowohl die innere als auch die äußere Form auf allen Organisationsebenen von der molekularen und zellulären Ebene bis zur Organismenebene umfasst (Sattler 1978, Einführung).

Seit die Molekulargenetik in Mode gekommen ist, wurde die Pflanzenmorphologie zunehmend vernachlässigt und teilweise in die evolutionäre Entwicklungsbiologie (evo-devo) integriert. Dennoch bleibt die Pflanzenmorphologie für nahezu alle Bereiche der Pflanzenbiologie wie Molekulargenetik, Physiologie, Ökologie, Evolutionsbiologie und Systematik von grundlegender Bedeutung. In diesen Bereichen werden morphologische Konzepte und/oder Theorien verwendet oder impliziert. Daher basieren diese Felder teilweise auf der Morphologie oder spiegeln diese wider (Kaplan 2001, Sattler und Rutishauser 1997).

Entgegen einem weit verbreiteten Missverständnis ist die Pflanzenmorphologie keine abgeschlossene Wissenschaft, sondern wie jede Wissenschaft offen für ständige Innovationen. Solche Neuerungen können morphologische Details, Konzepte, Theorien und sogar die disziplinäre Matrix (oder das Paradigma) betreffen. Meine Beiträge zur Pflanzenmorphologie waren empirischer und theoretischer Natur und beinhalteten eine Überarbeitung einiger der grundlegendsten Annahmen und Grundsätze in der disziplinären Matrix der Pflanzenmorphologie.

Mit vielen Studenten und Doktoranden, Technikern, Postdoktoranden, wissenschaftlichen Mitarbeitern und Kollegen habe ich in der zweiten Hälfte des 20. Jahrhunderts fast vierzig Jahre lang auf dem Gebiet der Pflanzenmorphologie geforscht (siehe meine Veröffentlichungen). Ein Schwerpunkt dieser Forschung war das dynamische Formkontinuum bei Pflanzen, insbesondere bei Blütenpflanzen. Eine Übersicht über viele Aspekte dieser Forschung findet sich in meinem Buchkapitel mit dem Titel &ldquoHomologie, Homöose und Prozessmorphologie in Pflanzen&rdquo (Sattler 1994). Was folgt, ist eine allgemeine Diskussion grundlegender Fragen der Pflanzenmorphologie. Verweise auf unsere Beiträge finden Sie in der Liste meiner Publikationen. Einen Rundgang durch einige meiner wichtigsten Veröffentlichungen finden Sie in meinem Aufsatz The Evolution of my Phytomorphological Research in my Publications und Plant Evo-Devo (Evolutionary Developmental Biology) .


Hauptfach Medizintechnik (MEDT)

Hauptberater: Brandy Roberts, Dir. der Studienfachberatung
Büro: 117 Harned Hall

Medizintechniker werden auf Positionen in Krankenhauslaboren, Kliniken, Forschungslabors, im öffentlichen Gesundheitswesen und in verschiedenen lokalen, staatlichen und bundesstaatlichen Gesundheitsorganisationen vorbereitet.

Der Lehrplan für Medizintechnik, der zum Bachelor of Science der Mississippi State University führt, umfasst ein dreijähriges Studium an der Mississippi State University und ein Studienjahr an einer von der National Accrediting Agency for Clinical Laboratory Sciences akkreditierten Krankenhausschule für Medizintechnik. Die Aufnahme in die Krankenhausschule ist kompetitiv. Ein Student, der die drei Jahre auf dem Campus zufriedenstellend abgeschlossen hat und die Aufnahme in eine Krankenhausschule erhalten hat, wird sich für die Krankenhausphase anmelden und gilt im letzten Studienjahr als im Bundesstaat Mississippi eingeschrieben. Die Absolventen werden auf die Zertifizierung durch mehrere nationale Agenturen vorbereitet.


Einführung

Das Gen ist die physikalische Einheit der Vererbung, und Gene sind auf den Chromosomen linear angeordnet. Chromosomenverhalten und Interaktion während der Meiose erklären auf zellulärer Ebene Vererbungsmuster, die wir in Populationen beobachten. Genetische Störungen mit Veränderungen der Chromosomenzahl oder -struktur können dramatische Auswirkungen haben und die Entwicklung einer befruchteten Eizelle verhindern.

Als Amazon-Partner verdienen wir an qualifizierten Käufen.

Möchten Sie dieses Buch zitieren, teilen oder ändern? Dieses Buch ist Creative Commons Attribution License 4.0 und Sie müssen OpenStax zuordnen.

    Wenn Sie dieses Buch ganz oder teilweise in gedruckter Form weitergeben, müssen Sie auf jeder physischen Seite die folgende Zuordnung angeben:

  • Verwenden Sie die folgenden Informationen, um ein Zitat zu generieren. Wir empfehlen die Verwendung eines Zitationstools wie dieses.
    • Autoren: Mary Ann Clark, Matthew Douglas, Jung Choi
    • Herausgeber/Website: OpenStax
    • Buchtitel: Biologie 2e
    • Erscheinungsdatum: 28.03.2018
    • Ort: Houston, Texas
    • Buch-URL: https://openstax.org/books/biology-2e/pages/1-introduction
    • Abschnitts-URL: https://openstax.org/books/biology-2e/pages/13-introduction

    © 7. Januar 2021 OpenStax. Von OpenStax produzierte Lehrbuchinhalte sind unter einer Creative Commons Attribution License 4.0-Lizenz lizenziert. Der OpenStax-Name, das OpenStax-Logo, die OpenStax-Buchcover, der OpenStax CNX-Name und das OpenStax CNX-Logo unterliegen nicht der Creative Commons-Lizenz und dürfen ohne vorherige und ausdrückliche schriftliche Zustimmung der Rice University nicht reproduziert werden.


    Pflanzenbiologie, Taxonomie und Morphologie

    In diesem Selbststudium lernen Sie die Pflanzenteile und ihre Funktionsweise. Sie werden die Pflanzenentwicklung und Pflanzenprozesse wie Photosynthese, Atmung und Transpiration überprüfen. Die Informationen werden mit einem spezifischen Fokus auf das Management von Pflanzen in einer Landschaft präsentiert.

    Lehrvideos, Bilder, kurze Lesungen und Fragen zur Wissensüberprüfung lehren Sie über Pflanzentaxonomie und -morphologie, damit Sie Pflanzen genau identifizieren und wissenschaftliche Pflanzennamen, gebräuchliche Namen und Sorten verwenden können. Für Landschaftsgärtner hilft dies bei der Kommunikation mit Anbietern und Kunden. Sie erfahren auch mehr über Pflanzenabwehr und Umweltfaktoren, die das Überleben von Pflanzen beeinflussen.

    Dieser Kurs besteht aus vier Abschnitten und jeder hat ein Quiz am Ende. Sie müssen in jedem Quiz eine Punktzahl von mehr als 80% erreichen, um diesen Kurs zu bestehen und ein Abschlusszertifikat zu erhalten.

    Dieser Kurs qualifiziert für 2 Weiterbildungseinheiten (CEUs) von Pennsylvania Certified Horticulturist (PCH). Um diesen Kredit zu erhalten, schließen Sie den Kurs ab und erhalten Sie ein Abschlusszertifikat. Dann reichen Sie Ihr Abschlusszertifikat ein, wenn Sie Ihre CEUs bei der Pennsylvania Landscape and Nursery Association einreichen.

    Dieser Kurs wurde durch die großzügigen Beiträge der Pennsylvania Landscape and Nursery Association unterstützt.


    Pflanzenthemen

    • Pflanzenchemie
    • Pflanzenentwicklung
    • Pflanzen und Menschen
    • Pflanzenteile
    • Samenausbreitung
    • Photosynthese

    Da die Botaniker von UntamedScience in diesem Jahr weitere Informationen hinzufügen, werden wir diesen Seiten auch Lehrvideos hinzufügen. Seien Sie jedoch geduldig mit uns, diese Seiten befinden sich alle im Aufbau …


    Wird oft zusammen gekauft

    Rezension

    Lob für die Erstausgabe:

    „Es ist das beste Buch zum Thema Pflanzenanatomie seit den Texten von „Esau. kann ebenso gut als Text dienen. oder als Nachschlagewerk für Forscher."
    Carol A. Peterson, Annalen der Botanik

    "Ein fabelhafter und wichtiger Beitrag, den jeder lesen sollte, der sich Botaniker nennt."
    Karl J. Niklas, Liberty Hyde Bailey Professor für Pflanzenbiologie, Cornell University

    "Eine Einführung in die Pflanzenstruktur und -entwicklung: Pflanzenanatomie für das 21. Jahrhundert ist eine bedeutende und informative Synthese. Wer sich für Pflanzenstruktur interessiert, wird wahrscheinlich eine wertvolle Referenz finden, die es wert ist, sie zu besitzen. Für mich beweist sie bereits ihre Nützlichkeit in sowohl in der Lehre als auch in der Forschung."
    William B. Sanders, Florida Gulf Coast University for Plant Science Bulletin

    Buchbeschreibung

    Über den Autor


    Einführung in die Paläobotanik, wie fossile Pflanzen entstehen

    Thomas N. Taylor, . Michael Krings , in Paläobotanik (Zweite Ausgabe) , 2009

    Kohle Kugeln.

    Wir wissen mehr über die Anatomie, Morphologie und Biologie der Kohlensumpfpflanzen des Karbons als aus jeder anderen Zeit, und dies ist hauptsächlich auf Kohlekugeln zurückzuführen. Während des Karbons lagen Nordamerika und Europa in der Nähe des Äquators und enthielten ausgedehnte tropische Wälder, die zu den für diese Gebiete heute charakteristischen umfangreichen Kohlevorkommen beitrugen. Mit einigen dieser Kohlevorkommen sind Kohlekugeln (Fig. 1.51–1.53) verbunden, verschieden geformte Knollen, die in bituminösen Kohleflözen vorkommen. Kohlekugeln stellen permineralisierte Torfablagerungen dar und bestehen fast ausschließlich aus in Calciumcarbonat konservierten Pflanzenteilen. Einige der ersten in England gefundenen waren fast kugelförmig, daher der Name Kohlenkugel, aber sie können eine unregelmäßige Form haben und eine Dicke von wenigen Zentimetern bis zu vielen Metern haben. Einige der ältesten stammen aus dem oberen Namur (Upper Mississippian) Deutschlands und Tschechiens, sind aber auch aus Perm-Kohlevorkommen in China bekannt. Sie können leicht mit der Peel-Technik untersucht werden.

    Abbildung 1.51. Sammeln von Kohlekugeln in einem Tagebau im südlichen Illinois.

    Abbildung 1.52. Graben von Kohlekugeln von einem Bachufer in Illinois, USA.

    Abbildung 1.53. Transport von Säcken mit Kohlekugeln von einem Standort in Kentucky, USA.

    Die Methode zur Bildung von Kohlekugeln wurde von einer Reihe von Paläobotanikern untersucht (Falcon-Lang, 2008), beginnend mit Stopes und Watson (1908), aber der Prozess ist noch immer nicht vollständig verstanden. Im frischen oder teilweise verfaulten Torf war der Torf mit Karbonaten (Fasercalcit) infiltriert, bevor die Pflanzen darin weitgehend verdichtet wurden. Da einige Kohlekugeln mit marinen Kalksteinen in Verbindung gebracht werden, wurde vermutet, dass die Pflanzen in tief liegenden, sumpfigen Gebieten in Meeresnähe wuchsen, und diese Hypothese passt zur Paläogeographie des mittleren Kontinents Nordamerika während des Karbons. Bei Stürmen oder Meeresüberschreitungen (Mamay und Yochelson, 1962) wurde der Kohlensumpf von Meerwasser überschwemmt, das eine Kalziumkarbonatquelle für die Permineralisierung lieferte. Diese Hypothese erklärt die Mischnatur einiger Kohlekugeln, in denen sowohl Pflanzen- als auch Meerestierreste erhalten sind. Scott und Rex (1985) schlugen vor, dass nicht alle Kohlekugeln durch denselben Prozess gebildet werden, und stellten ein nicht-marines Formationsmodell vor, bei dem die permineralisierenden Flüssigkeiten aus perkolierendem Grundwasser mit hohem Karbonatgehalt stammen. Scottet al. (1996) untersuchten den Ursprung von Kohlekugeln aus Karbon und Perm aus Euramerika und China und kamen zu dem Schluss, dass je nach Region und Lage der Kohlekugeln im Kohleflöz mehrere unterschiedliche Mechanismen beteiligt waren. Basierend auf Kohlenstoffisotopen fanden sie heraus, dass einige Kohlekugeln eine Mischung aus marinem und meteorischem Süßwasser enthielten, das durch den Torf sickerte, und stellten fest, dass sich die meisten Kohlekugeln in Süßwasserbecken mit zumindest etwas marinem Einfluss bildeten. Es besteht kein Zweifel, dass die Bildung von Kohlekugeln ein hochspezialisierter Prozess war, da nach dem Karbon‐Perm keine mehr bekannt sind. Für den Bergmann stellen diese Kalziumkarbonat-Kohlekugeln Verunreinigungen in der Kohle dar, die oft als „Fehler“ bezeichnet werden, aber für den Paläobotaniker bieten sie eine Quelle faszinierender Informationen, mit denen die Biologie der Pflanzen untersucht werden kann, die in den Torfsümpfen lebten vor Hunderten von Millionen Jahren.


    Verweise

    Abramoff, M.D., Magalh฾s, P.J. und Ram, S.J. (2004). Bildbearbeitung mit ImageJ. Biophotonik Int. 11, 36�.

    Armengaud, P., Zambaux, K., Hills, A., Sulpice, R., Pattison, R.J., Blatt, M.R., et al. (2009). EZ-Rhizo: integrierte Software für die schnelle und genaue Messung der Wurzelsystemarchitektur. Pflanze J. 57, 945�. doi: 10.1111/j.1365-313X.2008.03739.x

    Auger, S. und Shipley, B. (2012). Interspezifische und intraspezifische Merkmalsvariation entlang kurzer Umweltgradienten in einem alten gemäßigten Wald. J. Gemüse. Wissenschaft 24, 419�. doi: 10.1111/j.1654-1103.2012.01473.x

    Bailey, J.K., Hendry, A.P., Kinnison, M.T., Post, D.M., Palkovacs, E.P., Pelletier, F. et al. (2009a). Von Genen zu Ökosystemen: eine aufkommende Synthese öko-evolutionärer Dynamiken. Neues Phytol. 184, 746�. doi: 10.1111/j.1469-8137.2009.03081.x

    Bailey, J. K., Schweitzer, J. A., Ubeda, F., Koricheva, J., LeRoy, C. J., Madritch, M. D., et al. (2009b). Von Genen zu Ökosystemen: eine Synthese der Auswirkungen pflanzengenetischer Faktoren über Organisationsebenen hinweg. Philos. Übers. R. Soc. B 364, 1607�. doi: 10.1098/rstb.2008.0336

    Bangert, R.K., Allan, G.J., Turek, R.J., Wimp, G.M., Meneses, N., Martinsen, G.D. et al. (2006). Von den Genen zur Geographie: eine genetische Ähnlichkeitsregel für die Gemeinschaftsstruktur von Arthropoden auf mehreren geografischen Ebenen. Mol.-Nr. Öko. 15, 4215�. doi: 10.1111/j.1365-294X.2006.03092.x

    Bashline, L., Lei, L., Li, S. und Gu, Y. (2014). Zellwand, Zytoskelett und Zellexpansion bei höheren Pflanzen. Mol.-Nr. Anlage 7, 586�. doi: 10.1093/mp/ssu018

    Beemster, G. T. S., De Veylder, L., Vercruysse, S., West, G., Rombaut, D., Van Hummelen, P., et al. (2005). Genomweite Analyse von Genexpressionsprofilen im Zusammenhang mit Zellzyklusübergängen in wachsenden Organen von Arabidopsis. Pflanzenphysiologie. 138, 734�. doi: 10.1104/pp.104.053884

    Bensmihen, S., Hanna, A. I., Langlade, N. B., Micol, J. L., Bangham, A. und Coen, E. S. (2008). Mutationsräume für Blattform und -größe. HFSP J. 2, 110�. doi: 10.2976/1.2836738

    Berntson, G.M. (1997). Topologische Skalierung und Pflanzenwurzelsystemarchitektur: Entwicklungs- und Funktionshierarchien. Neues Phytol. 135, 621�. doi: 10.1046/j.1469-8137.1997.00687.x

    Bonser, A. M., Lynch, J. und Snapp, S. (1996). Auswirkung von Phosphormangel auf den Wachstumswinkel der Basalwurzeln in Phaseolus vulgaris. Neues Phytol. 132, 281�. doi: 10.1111/j.1469-8137.1996.tb01847.x

    Bossinger, G. und Smyth, D.R. (1996). Initiationsmuster der Blüten- und Blütenorganentwicklung in Arabidopsis thaliana. Entwicklung 122, 1093�. doi: 10.1105/tpc.1.1.37

    Boudon, F., Pradal, C., Cokelaer, T., Prusinkiewicz, P. und Godin, C. (2012). L-Py: ein L-System-Simulations-Framework zur Modellierung der Anlagenarchitekturentwicklung auf Basis einer dynamischen Sprache. Vorderseite. Pflanze Sci. 3:76. doi: 10.3389/fpls.2012.00076

    Bucksch, A. (2014). Eine praktische Einführung in Skelette für die Pflanzenwissenschaften. Appl. Pflanze Sci. 2:1400005. doi: 10.3732/apps.1400005

    Bucksch, A., Burridge, J., York, L.M., Das, A., Nord, E., Weitz, J.S., et al. (2014). Bildbasierte Hochdurchsatz-Feld-Phänotypisierung von Pflanzenwurzeln. Pflanzenphysiologie. 166, 470�. doi: 10.1104/pp.114.243519

    Bucksch, A., Lindenbergh, R. und Menenti, M. (2010). SkelTre. Vis. Berechnen. 26, 1283�. doi: 10.1007/s00371-010-0520-4

    Burridge, J., Schneider, H. M., Huynh, B.-L., Roberts, P. A., Bucksch, A. und Lynch, J. P. (2016). Genomweite Assoziationskartierung und agronomische Auswirkungen der Wurzelarchitektur von Kuherbsen. Theor. Appl. Genet. doi: 10.1007/s00122-016-2823-y [Epub vor Druck].

    Chen, B.J.W., Während, H.J. und Anten, N.P.R. (2012). Detect thy Nachbarn: Identitätserkennung auf Wurzelebene bei Pflanzen. Pflanze Sci. 195, 157�. doi: 10.1016/j.plantsci.2012.07.006

    Chew, Y. H., Smith, R. W., Jones, H. J., Seaton, D. D., Grima, R. und Halliday, K. J. (2014). Mathematische Modelle beleuchten Pflanzensignale. Pflanzenzelle 26, 5�. doi: 10.1105/tpc.113.120006

    Chitwood, D.H., Headland, L.R., Kumar, R., Peng, J., Maloof, J.N. und Sinha, N.R. (2012). Der Entwicklungsverlauf der Blattmorphologie bei wildlebenden Tomatenarten. Pflanzenphysiologie. 158, 1230�. doi: 10.1104/pp.111.192518

    Chitwood, D.H., Klein, L.L., O’Hanlon, R., Chacko, S., Greg, M., Kitchen, C., et al. (2016a). In das Weinblatt eingebettete latente Entwicklungs- und Evolutionsformen. Neues Phytol. 210, 343�. doi: 10.1111/nph.13754

    Chitwood, D.H., Kumar, R., Headland, L.R., Ranjan, A., Covington, M.F., Ichihashi, Y., et al. (2013). Eine quantitative genetische Grundlage für die Blattmorphologie in einem Satz genau definierter Tomaten-Introgressionslinien. Pflanzenzelle 25, 2465�. doi: 10.1105/tpc.113.112391

    Chitwood, D.H., Ranjan, A., Martinez, C.C., Headland, L.R., Thiem, T., Kumar, R. et al. (2014). Eine moderne Ampelographie: eine genetische Grundlage für Blattform und Adernmuster in der Traube. Pflanzenphysiologie. 164, 259�. doi: 10.1104/pp.113.229708

    Chitwood, D.H., Rundell, S.M., Li, D.Y., Woodford, Q.L., Yu, T.T., Lopez, J.R., et al. (2016b). Klima- und Entwicklungsplastizität: interannuelle Variabilität in der Morphologie der Weinblätter. Pflanzenphysiologie. 170, 1480�. doi: 10.1104/pp.15.01825

    Chitwood, D.H. und Sinha, N.R. (2016). Evolutionäre und Umweltkräfte formen die Blattentwicklung. Curr. Biol. 4, R297–R306. doi: 10.1016/j.cub.2016.02.033

    Clark, C. und Kalita, J. (2014). Ein Vergleich von Algorithmen zur paarweisen Ausrichtung biologischer Netzwerke. Bioinformatik 30, 2351�. doi: 10.1093/Bioinformatik/btu307/-/DC1

    Clark, R.T., MacCurdy, R.B., Jung, J.K., Shaff, J.E., McCouch, S.R., Aneshansley, D.J. et al. (2011). Dreidimensionale Wurzelphänotypisierung mit einer neuartigen Bildgebungs- und Softwareplattform. Pflanzenphysiologie. 156, 455�. doi: 10.1104/pp.110.169102

    Cooper, L. und Jaiswal, P. (2016). Die Pflanzenontologie: ein Werkzeug für die Pflanzengenomik. Methoden Mol. Biol. 1374, 89�. doi: 10.1007/978-1-4939-3167-5_5

    Crutsinger, G. M., Collins, M. D., Fordyce, J. A., Gompert, Z., Nice, C. C. und Sanders, N. J. (2006). Die genotypische Diversität von Pflanzen sagt die Gemeinschaftsstruktur voraus und steuert einen Ökosystemprozess. Wissenschaft 313, 966�. doi: 10.1126/science.1128326

    Cui, M.L., Copsey, L., Green, A.A., Bangham, J.A. und Coen, E. (2010). Quantitative Kontrolle der Organform durch kombinatorische Genaktivität. PLoS Biol. 8:e1000538. doi: 10.1371/journal.pbio.10000538

    Das, A., Schneider, H., Burridge, J., Ascanio, A. K. M., Wojciechowski, T., Topp, C. N., et al. (2015). Digital Imaging of Root Traits (DIRT): eine Hochdurchsatz-Computing- und Kollaborationsplattform für feldbasierte Wurzelphänomene. Pflanzenmethoden 11:51. doi: 10.1186/s13007-015-0093-3

    de Boer, H. J., Price, C. A., Wagner-Cremer, F., Dekker, S. C., Franks, P. J. und Veneklaas, E. J. (2016). Optimale Aufteilung der Blattepidermisfläche für den Gasaustausch. Neues Phytol. 210, 1219�. doi: 10.1111/nph.13929

    Draye, X., Kim, Y., Lobet, G. und Javaux, M. (2010). Modellgestützte Integration physiologischer und umweltbedingter Einschränkungen, die die dynamischen und räumlichen Muster der Wurzelwasseraufnahme aus Böden beeinflussen. J. Erw. Bot. 61, 2145�. doi: 10.1093/jxb/erq077

    Eichhorst, P. und Savitch, W.J. (1980). Wachstumsfunktionen stochastischer Lindenmayer-Systeme. Informieren. Steuerung 45, 217�. doi: 10.1016/S0019-9958(80)90593-8

    S. Fang, R.T. Clark, Y. Zheng, A.S. Iyer-Pascuzzi, J.S. Weitz, L.V. Kochian et al. (2013). Genotypische Erkennung und räumliche Reaktionen durch Reiswurzeln. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft VEREINIGTE STAATEN VON AMERIKA. 110, 2670�. doi: 10.1073/pnas.1222821110

    A. Feng, Y. Wilson, J. Bowers, R. Kennaway, A. Bangham, A. Hannah et al. (2009). Entwicklung der Allometrie bei Antirrhinum. Pflanzenzelle 21, 2999�. doi: 10.1105/tpc.109.069054

    Ficklin, S.P. und Feltus, F.A. (2011). Ausrichtung von Gen-Coexpressionsnetzwerken und Konservierung von Genmodulen zwischen zwei Grasarten: Mais und Reis. Pflanzenphysiologie. 156, 1244�. doi: 10.1104/pp.111.173047

    French, A., Ubeda-Tomás, S., Holman, T.J., Bennett, M.J. und Pridmore, T. (2009). Hochdurchsatzquantifizierung des Wurzelwachstums mit einem neuartigen Bildanalysetool. Pflanzenphysiologie. 150, 1784�. doi: 10.1104/pp.109.140558

    Galkovskyi, T., Mileyko, Y., Bucksch, A., Moore, B., Symonova, O., Price, C.A., et al. (2012). GiA Roots: Software für die Hochdurchsatzanalyse der Pflanzenwurzelsystemarchitektur. BMC Pflanzenbiol. 12:116. doi: 10.1186/1471-2229-12-116

    Gendreau, E., Traas, J., Desnos, T., Grandjean, O., Caboche, M. und Hofte, H. (1997). Zelluläre Basis des Hypokotylwachstums in Arabidopsis thaliana. Pflanzenphysiologie. 114, 295�. doi: 10.1104/pp.114.1.295

    Godin, C. (2000). Pflanzenarchitektur darstellen und codieren: eine Übersicht. Ann. Zum. Wissenschaft 57, 413�. doi: 10.1051/Wald:2000132

    Godin, C. und Caraglio, Y. (1998). Ein Multiskalenmodell topologischer Pflanzenstrukturen. J. Theor. Biol. 191, 1�. doi: 10.1006/jtbi.1997.0561

    Godin, C., Costes, E. und Sinoquet, H. (1999). Eine Methode zur Beschreibung einer Anlagenarchitektur, die Topologie und Geometrie integriert. Ann. Bot. 84, 343�. doi: 10.1006/anbo.1999.0923

    Hartley, R. und Zisserman, A. (2005). Geometrie mit mehreren Ansichten in der Computer Vision. Cambridge: Cambridge University Press.

    Hemmerling, R., Kniemeyer, O., Lanwert, D., Kurth, W. und Buck-Sorlin, G. (2008). Die regelbasierte Sprache XL und die Modellierungsumgebung GroIMP illustriert mit simuliertem Baumwettbewerb. Funktion Pflanzenbiol. 35, 739�. doi: 10.1071/FP08052

    Hervieux, N., Dumond, M., Sapala, A., Routier-Kierzkowska, A.-L., Kierzkowski, D., Roeder, A.H.K., et al. (2016). Ein mechanisches Feedback schränkt das Wachstum und die Form der Kelchblätter ein Arabidopsis. Curr. Biol. 26, 1019�. doi: 10.1016/j.cub.2016.03.004

    Hille Ris Lambers, J., Adler, P. B., Harpole, W. S., Levine, J. M. und Mayfield, M. M. (2012). Überdenken der Gemeindeversammlung durch die Linse der Koexistenztheorie. Annu. Rev. Ökol. Entwicklung Syst. 43, 227�. doi: 10.1146/annurev-ecolsys-110411-160411

    Hodge, A. (2004). Die Plastikpflanze: Wurzelreaktionen auf heterogene Nährstoffversorgung. Neues Phytol. 162, 9�. doi: 10.1111/j.1469-8137.2004.01015.x

    Hong, L., Dumond, M., Tsugawa, S., Sapala, A., Routier-Kierzkowska, A.-L., Zhou, Y. et al. (2016). Variables Zellwachstum führt zu einer reproduzierbaren Organentwicklung durch raumzeitliche Mittelung. Abw. Zelle 38, 15�. doi: 10.1016/j.devcel.2016.06.016

    Hughes, A. R., Inouye, B. D., Johnson, M. T. J., Underwood, N. und Vellend, M. (2008). Ökologische Folgen genetischer Vielfalt. Öko. Lette. 11, 609�. doi: 10.1111/j.1461-0248.2008.01179.x

    Hund, A., Trachsel, S. und Stamp, P. (2009). Wachstum von Achsel- und Seitenwurzeln von Mais: I. Entwicklung einer Phänotypisierungsplattform. Pflanzenerde 325, 335�. doi: 10.1007/s11104-009-9984-2

    K. Ilic, E.A. Kellogg, P. Jaiswal, F. Zapata, P.F. Stevens, L.P. Vincent et al. (2007). Die Pflanzenstruktur-Ontologie, ein einheitliches Vokabular der Anatomie und Morphologie einer blühenden Pflanze. Pflanzenphysiologie. 143, 587�. doi: 10.1104/pp.106.092825

    Ito, F., Komatsubara, S., Shigezawa, N., Morikawa, H., Murakami, Y., Yoshino, K. et al. (2015). Mechanismen der Wassersammlung in Pflanzen durch Morphologieänderung von konischen Haaren. Appl. Phys. Lette. 106:133701. doi: 10.1063/1.4916213

    Iyer-Pascuzzi, A. S., Symonova, O., Mileyko, Y., Hao, Y., Belcher, H., Harer, J., et al. (2010). Bildgebungs- und Analyseplattform für die automatische Phänotypisierung und das Merkmalsranking von Pflanzenwurzelsystemen. Pflanzenphysiologie. 152, 1148�. doi: 10.1104/pp.109.150748

    Jain, A.K. (1989). Grundlagen der digitalen Bildverarbeitung. Upper Saddle River, NJ: Prentice-Hall, Inc.

    Jaramillo, R. E., Nord, E. A., Chimungu, J. G., Brown, K. M. und Lynch, J. P. (2013). Die Belastung der Wurzelrinde beeinflusst die Trockenheitstoleranz von Mais. Ann. Bot. 112, 429�. doi: 10.1093/aob/mct069

    Johnson, M., Lajeunesse, M.J. und Agrawal, A.A. (2006). Additive und interaktive Effekte der genotypischen Diversität von Pflanzen auf Arthropodengemeinschaften und Pflanzenfitness. Öko. Lette. 9, 24�. doi: 10.1111/j.1461-0248.2005.00833.x

    Jung, J. und McCouch, S. (2013). Den Wurzeln auf den Grund gehen: genetische und hormonelle Kontrolle der Wurzelarchitektur. Vorderseite. Pflanze Sci. 4:186. doi: 10.3389/fpls.2013.00186/abstract

    Kichenin, E., Wardle, D.A., Peltzer, D.A., Morse, C.W. und Freschet, G.T. (2013). Gegensätzliche Effekte der inter- und intraspezifischen Variation von Pflanzen auf Merkmalsmessungen auf Gemeinschaftsebene entlang eines Umweltgradienten. Funktion Öko. 27, 1254�. doi: 10.1111/1365-2435.12116

    Kleyer, M., Bekker, R.M., Knevel, I.C., Bakker, J.P., Thompson, K., Sonnenschein, M., et al. (2008). Die LEDA Traitbase: eine Datenbank mit lebensgeschichtlichen Merkmalen für die nordwesteuropäische Flora. J. Ecol. 96, 1266�. doi: 10.1111/j.1365-2745.2008.01430

    Krajewski, P., Chen, D., Cwiek, H., van Dijk, A.D.J., Fiorani, F., Kersey, P. et al. (2015). Zu Empfehlungen für Metadaten und Datenhandhabung in der Pflanzenphänotypisierung. J. Erw. Bot. 66, 5417�. doi: 10.1093/jxb/erv271

    Kuchaiev, O., Milenkoviæ, T., Memiᘞviæ, V., Hayes, W. und Pržulj, N. (2010). Topologische Netzwerkausrichtung deckt biologische Funktion und Phylogenie auf. J. R. Soc. Interf. 7, 1341�. doi: 10.1098/rsif.2010.00063

    Kuhl, F.P. und Giardina, C.R. (1982). Elliptische Fourier-Merkmale einer geschlossenen Kontur. Berechnen. Graph. Bildprozess. 19, 236�. doi: 10.1016/0146-664X(82)90034-X

    Kuijken, R.C.P., van Eeuwijk, F.A., Marcelis, L.F.M. und Bouwmeester, H.J. (2015). Wurzel-Phänotypisierung: vom Komponentenmerkmal im Labor bis zur Züchtung: Tabelle 1. J. Erw. Bot. 66, 5389�. doi: 10.1093/jxb/erv239

    Kurth, W., Kniemeyer, O. und Buck-Sorlin, G. (2005). “Relational Growth Grammars𠄾in Ansatz zum Umschreiben von Graphen für dynamische Systeme mit dynamischer Struktur,” in Unkonventionelle Programmierparadigmen, Hrsg. J.-P. Banâtre, P. Fradet, J.-L. Giavitto und O. Michel (Berlin: Springer), 56�. doi: 10.1007/11527800_5

    Kutschera, U. und Niklas, K.J. (2007). Die epidermale Wachstumssteuerungstheorie der Stammverlängerung: eine alte und eine neue Perspektive. J. Plant Physiol. 164, 1395�. doi: 10.1016/j.jplph.2007.08.002

    Langlade, N.B., Feng, X., Dransfield, T., Copsey, L., Hanna, A.I., Thebaud, C. et al. (2005). Evolution durch genetisch kontrollierten Allometrieraum. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft VEREINIGTE STAATEN VON AMERIKA. 102, 10221�. doi: 10.1073/pnas.0504210102

    Lankau, R.A. und Strauss, S.Y. (2007). Gegenseitige Rückkopplungen erhalten sowohl die genetische als auch die Artenvielfalt in einer Pflanzengemeinschaft. Wissenschaft 317, 1561�. doi: 10.1126/science.1147455

    Laughlin, D.C. und Laughlin, D.E. (2013). Fortschritte bei der Modellierung merkmalsbasierter Pflanzengemeinschaften. Trends Plant Sci. 18, 584�. doi: 10.1016/j.tplants.2013.04.012

    Leitner, D., Klepsch, S., Ptashnyk, M., Marchant, A., Kirk, G. J. D., Schnepf, A., et al. (2010). Ein dynamisches Modell der Nährstoffaufnahme durch Wurzelhaare. Neues Phytol. 185, 792�. doi: 10.1111/j.1469-8137.2009.03128.x

    Li, L., Zhang, Q. und Huang, D. (2014). Eine Übersicht über bildgebende Verfahren zur Pflanzen-Phänotypisierung. Sensoren 14, 20078�. doi: 10.3390/s141120078

    Lindenmayer, A. (1968). Mathematische Modelle für zelluläre Interaktion in der Entwicklung, Teil I und II. J. Theor. Biol. 18, 280�. doi: 10.1016/0022-5193(68)90079-9

    Lobet, G., Draye, X. und Perilleux, C. (2013). Eine Online-Datenbank für Softwaretools zur Pflanzenbildanalyse. Pflanzenmethoden 9:38. doi: 10.1186/1746-4811-9-38

    Lobet, G., Pages, L. und Draye, X. (2011). Eine neuartige Bildanalyse-Toolbox, die eine quantitative Analyse der Wurzelsystemarchitektur ermöglicht. Pflanzenphysiologie. 157, 29�. doi: 10.1104/pp.111.179895

    Lobet, G., Pound, M.P., Diener, J., Pradal, C., Draye, X., Godin, C. et al. (2015). Root-System-Markup-Sprache: hin zu einer einheitlichen Root-Architektur-Beschreibungssprache. Pflanzenphysiologie. 167, 617�. doi: 10.1104/pp.114.253625

    Lynch, J. (1995). Wurzelarchitektur und Pflanzenproduktivität. Pflanzenphysiologie. 109, 7�. doi: 10.1104/pp.109.1.7

    Lynch, J.P. (2007). Wurzeln der zweiten grünen Revolution. Aust. J.Bot. 55, 493�. doi: 10.1071/BT06118

    Lynch, J.P. (2011). Wurzelphene für eine verbesserte Bodenerkundung und Phosphorgewinnung: Werkzeuge für zukünftige Nutzpflanzen. Pflanzenphysiologie. 156, 1041�. doi: 10.1104/pp.111.175414

    Lynch, J.P. (2013). Steil, günstig und tief: ein Ideotyp zur Optimierung der Wasser- und N-Aufnahme durch Maiswurzelsysteme. Ann. Bot. 112, 347�. doi: 10.1093/aob/mcs293

    Lynch, J.P. (2014). Wurzelphene, die die Stoffwechselkosten der Bodenerkundung reduzieren: Chancen für die Landwirtschaft des 21. Jahrhunderts. Umgebung von Pflanzenzellen. 38, 1775�. doi: 10.1111/St.12451

    Lynch, J.P. und Brown, K.M. (2001). Mutterboden Nahrungssuche – eine architektonische Anpassung von Pflanzen an geringe Phosphorverfügbarkeit. Pflanzenerde 237, 225�. doi: 10.1023/A:1013324727040

    Lynch, J. P., Chimungu, J. G. und Brown, K. M. (2014). Wurzelanatomische Phene im Zusammenhang mit der Wasseraufnahme aus trocknendem Boden: Ziele für die Verbesserung der Kulturpflanzen. J. Erw. Bot. 65, 6155�. doi: 10.1093/jxb/eru162

    Lynch, J. P., Nielsen, K. L., Davis, R. D. und Jablokow, A. G. (1997). SimRoot: Modellierung und Visualisierung von Wurzelsystemen. Pflanzenerde 188, 139�. doi: 10.1023/A:1004276724310

    Mairhofer, S., Zappala, S., Tracy, S., Sturrock, C., Bennett, M.J., Mooney, S.J., et al. (2013). Wiederherstellung vollständiger Pflanzenwurzelsystemarchitekturen aus dem Boden mittels Röntgenmikrocomputertomographie. Pflanzenmethoden 9:8. doi: 10.1186/1746-4811-9-8

    Mairhofer, S., Zappala, S., Tracy, S.R., Sturrock, C., Bennett, M., Mooney, S.J., et al. (2012). RooTrak: Automated recovery of three-dimensional plant root architecture in soil from X-ray microcomputed tomography images using visual tracking. Pflanzenphysiologie. 158, 561�. doi: 10.1104/pp.111.186221

    Miguel, M. A., Postma, J. A., and Lynch, J. P. (2015). Phene synergism between root hair length and basal root growth angle for phosphorus acquisition. Pflanzenphysiologie. 167, 1430�. doi: 10.1104/pp.15.00145

    Milenkovic, T., Ng, W. L., Hayes, W., and Przulj, N. (2010). Optimal network alignment with graphlet degree vectors. Cancer Inform. 30, 121�. doi: 10.4137/CIN.S4744

    Ong, Y., Streit, K., Henke, M., and Kurth, W. (2014). An approach to multiscale modelling with graph grammars. Ann. Bot. 114, 813�. doi: 10.1093/aob/mcu155

    Pages, L. (2014). Branching patterns of root systems: quantitative analysis of the diversity among dicotyledonous species. Ann. Bot. 114, 591�. doi: 10.1093/aob/mcu145

    Peret, B., Desnos, T., Jost, R., Kanno, S., Berkowitz, O., and Nussaume, L. (2014). Root architecture responses: in search of phosphate. Pflanzenphysiologie. 166, 1713�. doi: 10.1104/pp.114.244541

    Piccolo, S. R., and Frampton, M. B. (2016). Tools and techniques for computational reproducibility. Gigawissenschaft 5, 1�. doi: 10.1186/s13742-016-0135-4

    Pi༞ros, M. A., Larson, B. G., Shaff, J. E., Schneider, D. J., Falcão, A. X., Yuan, L., et al. (2016). Evolving technologies for growing, imaging and analyzing 3D root system architecture of crop plants. J. Integr. Pflanzenbiol. 58, 230�. doi: 10.1111/jipb.12456

    Postma, J. A., and Lynch, J. P. (2011). Root cortical aerenchyma enhances the growth of maize on soils with suboptimal availability of nitrogen, phosphorus, and potassium. Pflanzenphysiologie. 156, 1190�. doi: 10.1104/pp.111.175489

    Pradal, C., Boudon, F., Nouguier, C., Chopard, J., and Godin, C. (2009). PlantGL: A Python-based geometric library for 3D plant modelling at different scales. Graph. Modelle 71, 1�. doi: 10.1016/j.gmod.2008.10.001

    Prusinkiewicz, P. (1986). “Graphical applications of L-systems,” in Proceedings of Graphics Interface �/Vision Interface �, eds M. Wein and E. M. Kidd (Vancouver, BC: Canadian Information Processing Society), 247�.

    Prusinkiewicz, P., Karwowski, R., and Lane, B. (2007). “The L+C plant modeling language,” in Functional-Structural Plant Modeling in Crop Production, eds J. Vos, L. F. M. Marcelis, P. H. B. de Visser, P. C. Struik, J. B. Evers, and R. J. Bogers (Wageningen: Springer), 27�.

    Prusinkiewicz, P., and Lindenmayer, A. (1990). The Algorithmic Beauty of Plants. New York, NY: Springer.

    Qu, X., Chatty, P. R., and Roeder, A. H. K. (2014). Endomembrane trafficking protein SEC24A regulates cell size patterning in Arabidopsis. Pflanzenphysiologie. 166, 1877�. doi: 10.1104/pp.114.246033

    Rameau, C., Bertheloot, J., Leduc, N., Andrieu, B., Foucher, F., and Sakr, S. (2015). Multiple pathways regulate shoot branching. Front Plant Sci. 5:74. doi: 10.3389/fpls.2014.00741

    Reich, P. B., Walters, M. B., Tjoelker, M. G., Vanderklein, D., and Buschena, C. (1998). Photosynthesis and respiration rates depend on leaf and root morphology and nitrogen concentration in nine boreal tree species differing in relative growth rate. Funktion Öko. 12, 395�. doi: 10.1046/j.1365-2435.1998.00209.x

    Rellán-Álvarez, R., Lobet, G., Lindner, H., Pradier, P.-L., Sebastian, J., Yee, M.-C., et al. (2015). GLO-Roots: an imaging platform enabling multidimensional characterization of soil-grown root systems. eLife 4, 1�. doi: 10.7554/eLife.07597

    Roeder, A. H. K., Chickarmane, V., Cunha, A., Obara, B., Manjunath, B. S., and Meyerowitz, E. M. (2010). Variability in the control of cell division underlies sepal epidermal patterning in Arabidopsis thaliana. PLoS Biol. 8:e1000367. doi: 10.1371/journal.pbio.1000367

    Roeder, A. H. K., Cunha, A., Ohno, C. K., and Meyerowitz, E. M. (2012). Cell cycle regulates cell type in the Arabidopsis sepal. Entwicklung 139, 4416�. doi: 10.1242/dev.082925

    Rousseau, D., Chéné, Y., Belin, E., Semaan, G., Trigui, G., Boudehri, K., et al. (2015). Multiscale imaging of plants: current approaches and challenges. Plant Methods 11:413. doi: 10.1186/s13007-015-0050-1

    Ruffel, S., Krouk, G., Ristova, D., Shasha, D., Birnbaum, K. D., and Coruzzi, G. M. (2011). Nitrogen economics of root foraging: transitive closure of the nitrate-cytokinin relay and distinct systemic signaling for N supply vs. demand. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft U.S.A. 108, 18524�. doi: 10.1073/pnas.1108684108

    Saengwilai, P., Nord, E. A., Chimungu, J. G., Brown, K. M., and Lynch, J. P. (2014). Root cortical aerenchyma enhances nitrogen acquisition from low-nitrogen soils in maize. Pflanzenphysiologie. 166, 726�. doi: 10.1104/pp.114.241711

    Savaldi-Goldstein, S., Peto, C., and Chory, J. (2007). The epidermis both drives and restricts plant shoot growth. Natur 446, 199�. doi: 10.1038/nature05618

    Schiessl, K., Muino, J. M., and Sablowski, R. (2014). Arabidopsis JAGGED links floral organ patterning to tissue growth by repressing Kip-related cell cycle inhibitors. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft VEREINIGTE STAATEN VON AMERIKA. 111, 2830�. doi: 10.1073/pnas.1320457111

    Siefert, A., Violle, C., Chalmandrier, L., Albert, C. H., Taudiere, A., Fajardo, A., et al. (2015). A global meta-analysis of the relative extent of intraspecific trait variation in plant communities. Öko. Lette. 18, 1406�. doi: 10.1111/ele.12508

    Sinoquet, H., and Rivet, P. (1997). Measurement and visualisation of the architecture of an adult tree based on a three-dimensional digitising device. Bäume 11, 265�. doi: 10.1007/s004680050084

    Smith, S., and De Smet, I. (2012). Root system architecture: insights from Arabidopsis and cereal crops. Philos. Übers. R. Soc. B Biol. Wissenschaft 367, 1441�. doi: 10.1098/rstb.2011.0234

    Suding, K. N., Lavorel, S., Chapin, F. S., Cornelissen, J. H. C., Diaz, S., Garnier, E., et al. (2008). Scaling environmental change through the community-level: a trait-based response-and-effect framework for plants. Glob. Change Biol. 14, 1125�. doi: 10.1111/j.1365-2486.2008.01557.x

    Symonova, O., Topp, C. N., and Edelsbrunner, H. (2015). DynamicRoots: a software platform for the reconstruction and analysis of growing plant roots. Plus eins 10:e0127657. doi: 10.1371/journal.pone.0127657

    Tauriello, G., Meyer, H. M., Smith, R. S., Koumoutsakos, P., and Roeder, A. H. K. (2015). Variability and constancy in cellular growth of Arabidopsis sepals. Pflanzenphysiologie. 169, 2342�. doi: 10.1104/pp.15.00839

    Tian, F., Bradbury, P. J., Brown, P. J., Hung, H., Sun, Q., Flint-Garcia, S., et al. (2011). Genome-wide association study of leaf architecture in the maize nested association mapping population. Nat. Genet. 43, 159�. doi: 10.1038/ng.746

    Topp, C. N., Iyer-Pascuzzi, A. S., Anderson, J. T., Lee, C.-R., Zurek, P. R., Symonova, O., et al. (2013). 3D phenotyping and quantitative trait locus mapping identify core regions of the rice genome controlling root architecture. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft VEREINIGTE STAATEN VON AMERIKA. 110, e1695�. doi: 10.1073/pnas.1304354110

    Trachsel, S., Kaeppler, S. M., Brown, K. M., and Lynch, J. P. (2011). Shovelomics: high throughput phenotyping of maize (Zea mays L.) root architecture in the field. Plant Soil 341, 75�. doi: 10.1007/s11104-010-0623-8

    Vandenbussche, F., Pierik, R., Millenaar, F. F., Voesenek, L. A., and Van Der Straeten, D. (2005). Reaching out of the shade. Curr. Meinung. Plant Biol 8, 462�. doi: 10.1016/j.pbi.2005.07.007

    Vellend, M., and Geber, M. A. (2005). Connections between species diversity and genetic diversity. Öko. Lette. 8, 767�. doi: 10.1111/j.1461-0248.2005.00775.x

    Verheijen, L. M., Brovkin, V., Aerts, R., Bönisch, G., Cornelissen, J. H. C., Kattge, J., et al. (2013). Impacts of trait variation through observed trait𠄼limate relationships on performance of an Earth system model: a conceptual analysis. Biogeowissenschaften 10, 5497�. doi: 10.5194/bg-10-5497-2013

    Violle, C., Enquist, B. J., McGill, B. J., Jiang, L., Albert, C. H., Hulshof, C., et al. (2012). The return of the variance: intraspecific variability in community ecology. Trends Öko. Evolut. 27, 245�. doi: 10.1016/j.tree.2011.11.014

    Vogel, G. (2013). How do organs know when they have reached the right size? Wissenschaft 340, 1156�. doi: 10.1126/science.340.6137.1156-b

    Whitham, T. G., Bailey, J. K., Schweitzer, J. A., Shuster, S. M., Bangert, R. K., LeRoy, C. J., et al. (2006). A framework for community and ecosystem genetics: from genes to ecosystems. Nat. Rev. Genet. 7, 510�. doi: 10.1038/nrg1877

    Zhang, H., Jennings, A., Barlow, P. W., and Forde, B. G. (1999). Dual pathways for regulation of root branching by nitrate. Proz. Natl. Akad. Wissenschaft VEREINIGTE STAATEN VON AMERIKA. 96, 6529�. doi: 10.1073/pnas.96.11.6529

    Zhu, J., Brown, K. M., and Lynch, J. P. (2010). Root cortical aerenchyma improves the drought tolerance of maize (Zea mays L.). Plant, Cell Environ. 33, 740�. doi: 10.1111/j.1365-3040.2009.02099.x

    Zurek, P. R., Topp, C. N., and Benfey, P. N. (2015). Quantitative trait locus mapping reveals regions of the maize genome controlling root system architecture. Pflanzenphysiologie. 167, 1487�. doi: 10.1104/pp.114.251751

    Keywords : morphology, topology, geometry, leaf, hypocotyl, sepal, roots, ecology

    Citation: Balduzzi M, Binder BM, Bucksch A, Chang C, Hong L, Iyer-Pascuzzi AS, Pradal C and Sparks EE (2017) Reshaping Plant Biology: Qualitative and Quantitative Descriptors for Plant Morphology. Vorderseite. Pflanze Sci. 8:117. doi: 10.3389/fpls.2017.00117

    Received: 23 August 2016 Accepted: 19 January 2017
    Published: 03 February 2017.

    Hartmut Stützel, Leibniz University of Hanover, Germany

    Copyright © 2017 Balduzzi, Binder, Bucksch, Chang, Hong, Iyer-Pascuzzi, Pradal and Sparks. Dies ist ein Open-Access-Artikel, der unter den Bedingungen der Creative Commons Attribution License (CC BY) verbreitet wird. The use, distribution or reproduction in other forums is permitted, provided the original author(s) or licensor are credited and that the original publication in this journal is cited, in accordance with accepted academic practice. Es ist keine Verwendung, Verbreitung oder Vervielfältigung gestattet, die nicht diesen Bedingungen entspricht.


    Doctor of Philosophy in Life Sciences with Plant Pathology Concentration

    It is recommended that the doctoral program include enrichment courses to be approved by the graduate committee. The enrichment program would consist of 12 course credits or equivalent special projects or study areas related to the specific interests and needs of the student.

    This program requires 60 credit hours of coursework above the baccalaureate degree.

    The student’s Ph.D. graduate committee will consist of a total of at least five members with at least three of these members from the department faculty. The student will submit a research proposal to the committee.

    The student must pass written and oral preliminary examinations dealing with his/her program of study. A student not passing the preliminary exams on a second attempt will be given the option of completing the research required for an M.S. (provided the coursework is also adequate). The student must pass a final oral defense of the dissertation upon completion of the research program.

    BCH 6013 Principles of Biochemistry: 3 hours.

    (Prerequisite: CH 2503, BIO 1134 or equivalent.) Three hours lecture. A survey of biochemistry designed to provide the non-major with a comprehensive background in the field. (Credit will not be given to students matriculating in the Biochemistry or Molecular Biology degree programs.)

    BCH 6113 Essentials of Molecular Genetics: 3 hours.

    Three hours lecture. A survey of molecular biology and genetics designed to provide the non-major with a comprehensive background in the field. (Credit will not be given to students matriculating in the Biochemistry or Molecular Biology degree program)

    BCH 6253 Macronutrients: Human Metabolism: 3 hours.

    (Prerequisites: FNH Majors: Grade of “C” or better or concurrent enrollment in BCH 4013 and Junior or Senior Standing or BCH Major). Three hours face-to-face lecture or web-based distance instruction. In-depth study of the chemistry and functionality of macronutrients in food systems and their biochemical impact on the human body. (Same as FNH 4253/6253)

    BCH 6333 Advanced Forensic Science: 3 hours.

    (Prerequisite:BCH 4013/6013 or BCH 4603/6603 and BCH 4613/6613 or consent of instructor). Three hours lecture. An advanced study of the central concepts in forensic science as they relate to physiology, biochemistry and statistics

    BCH 6414 Protein Methods: 4 hours.

    (Prerequisite: Coregistration in BCH 4603/6603). Two hours lecture. Four hours laboratory. A comprehensive course to teach the student the modern methods of protein biochemistry

    BCH 6443 Introduction to Public Health: 3 hours.

    (Prerequisite BIO 1134, BIO 1144 or consent of instructor). Three hours lecture. Introduction to the field of Public Health. Includes an overview of historic and existing health problems and disparities unique to the United States and Southeast and an overview of related epidemiological methods

    BCH 6503 Scientific Communication Skills: 3 hours.

    (Prerequisite: EN 1113 and MA 1713 and CH 4513 or consent of instructor, or Graduate standing). Three hours lecture. Introduction to developing information literature and survey of data manipulation and presentation skills

    BCH 6603 General Biochemistry I: 3 hours.

    (Prerequisites: CH 4564, CH 4523/6523 or consent of instructor). Three hours lecture. BCH 4603/6603 must be completed before student may enroll in BCH 4613/6613. Detailed studies of the structure and metabolism of carbohydrates, lipids, proteins, nucleic acids, enzymes, and coenzymes

    BCH 6613 General Biochemistry II: 3 hours.

    (Prerequisites: CH 4564, CH 4523/6523 or consent of instructor). Three hours lecture. BCH 4603/6603 must be completed before student may enroll in BCH 4613/6613. Detailed studies of the structure and metabolism of carbohydrates, lipids, proteins, nucleic acids, enzymes, and coenzymes

    BCH 6623 Biochemistry of Specialized Tissues: 3 hours.

    (Prerequisite: Coregistration in BCH 4613/6613). A continuation of BCH 4613/6613 to include a study of specialized tissues, hormones, acid-base balance in animals and other physiological parameters of biochemistry

    BCH 6713 Molecular Biology: 3 hours.

    (Prerequisite: Coregistration in BCH 4613/6613). Three hours lecture. A study of basic molecular process such as synthesis of DNA, RNA, and protein in both prokaryotic and eukaryotic cells. Offered fall semester. (Same as GNS 6713)

    BCH 6803 Integrative Protein Evolution: 3 hours.

    (Prerequisite BCH 4613/6613 Biochemistry II). This course focuses on providing students with an integrative view of molecular evolution, demonstrating how genomic mutations cause biochemical changes which are then reflected at the organismal level, using hemoglobin as our model system

    BCH 6804 Molecular Biology Methods: 4 hours.

    (Prerequisite:Coregistration in BCH 4613/6613). Two hours lecture. Four hours laboratory. A comprehensive course to teach the student the modern methods of molecular biology. (Same as GNS 4804/6804),

    BCH 6903 Plant Biochemistry and Molecular Biology: 3 hours.

    Three hours lecture. A comprehensive course on biochemical and molecular processes specific for plant cells. The course includes ample information on the molecular components and pathways required for plant response to pathogens and tolerance to environmental factors

    BCH 6990 Special Topics in Biochemistry, Molecular Biology, Entomology and Plant Pathology: 1-9 hours.

    Credit and title to be arranged. This course is to be used on a limited basis to offer developing subject matter areas not covered in existing courses. (Courses limited to two offerings under one title within two academic years)

    BCH 7000 Directed Individual Study in Biochemistry, Molecular Biology, Entomology and Plant Pathology: 1-6 hours.

    Hours and credits to be arranged

    BCH 8000 Thesis Research/ Thesis in Biochemistry, Molecular Biology, Entomology and Plant Pathology: 1-13 hours.

    Hours and credits to be arranged

    BCH 8101 Seminar: 1 hour.

    Review of current literature individual presentation of research or classical topics. Course can be taken twice for credit

    BCH 8243 Molecular Biology of Plants: 3 hours.

    (Prerequisite: Coregistration in BCH 4613/6613). Three hours lecture. A study of plant development at the molecular level. Emphasis will be placed on the influence of nucleic acid metabolism on plant development

    BCH 8631 Topics in Genomics: 1 hour.

    (Prerequisites:PSS/BCH 8653 or BCH 4713/6713 or BCH 8643 ). Review and discussion of classic and current genomics literatureindividual presentation of a seminar highlighting an area of genomics research. (Same as PSS 8631)

    BCH 8633 Enzymes: 3 hours.

    (Prerequisites: BCH 4613/6613). Three hours lecture. A study of enzymes their purification, classification, kinetics and mechanisms

    BCH 8643 Molecular Genetics: 3 hours.

    (Prerequisites: PO 3103, or BIO 3103, and Coregistration in BCH 5613/7613). Three hours lecture. Study of the gene and its expression with emphasis on structure and function in higher organisms. (Same as GNS 8643)

    BCH 8653 Genomes and Genomics: 3 hours.

    (Prerequisites:BCH 4113/6113 or BCH 4713/6713 or BCH 8643 or consent of instructor). Overview of genome structure and evolution with emphasis on genomics, the use of molecular biology, robotics, and advanced computational methods to efficiently study genomes. (Same as PSS 8653)

    BCH 8654 Intermediary Metabolism: 4 hours.

    (Prerequisite: BCH 4613/6613). Four hours lecture. An advanced in-depth study of anabolic and catabolic pathways involved in cellular metabolism. Bioenergetics and control mechanisms will be emphasized

    BCH 8663 Proteome and Proteomics: 3 hours.

    Three hours lecture. This course introduces proteome (the entire complement of proteins in cells) and proteomics which is the large-scale study of proteomes, directed to analyzing protein function in a cellular context. It is designed to cover the fundamental concepts of proteomics and its applications to biomedical research

    BCH 8990 Special Topics in Biochemistry, Molecular Biology, Entomology and Plant Pathology: 1-9 hours.

    Credit and title to be arranged. This course is to be used on a limited basis to offer developing subject matter areas not covered in existing courses. (Courses limited to two offerings under one title within two academic years)

    BCH 9000 Dissertation Research/ Dissertation in Biochemistry,Molecular Biology,Entomology and Plant Pathology: 1-13 hours.

    Hours and credit to be arranged

    EPP 6113 Principles of Plant Pathology: 3 hours.

    (Prerequisites: BIO 1134 and Bio 1144 or consent of instructor). Two hours lecture. Three hours laboratory. Acquiring a general knowledge of the principles of plant pathology through a study of selected plant diseases of economic importance for Mississippi

    EPP 6143 Insect Ecology: 3 hours.

    Three hours lecture. Interaction of insects with their environment, including behavioral ecology, abiotic influences, population dynamics, species interactions, and effects of insects on ecosystem structure and function

    EPP 6152 Advanced Fungal Taxonomy-Fungi Imperfecti: 2 hours.

    (Prerequisite:Consent of Instructor). One hour lecture. Two hours laboratory. Methods and practice in identification of taxon-fungi imperfecti in different ecosystems. Includes conventional macroscopic and microscopic techniques for identification compared with molecular methods

    EPP 6154 General Entomology: 4 hours.

    Two hours lecture. Four hours laboratory. Fall semester. Biology of insects including morphology, physiology, development, ecology and emphasis on classification of orders and common families

    EPP 6162 Advanced Fungal Taxonomy-Ascomycetes: 2 hours.

    (Prerequisite: Consent of Instructor).One hour lecture. Two hours laboratory.Methods and practice in identification of taxon-ascomycetes in different ecosystems. Includes conventional macroscopic and microscopic techniques for identification compared with molecular methods

    EPP 6163 Plant Disease Management: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 4113/6113 or consent of instructor). Two hours lecture. Three hours laboratory. Techniques and fundamentals of plant disease management. Disease dynamics related to management, avoidance, exclusion, eradication of pathogens principles of plant protection, spraying techniques biological control. Spring semester

    EPP 6164 Insect Taxonomy: 4 hours.

    (Prerequisite: EPP 4154). Two hours lecture. Six hours laboratory. Spring semester. Advanced study of insect classification

    EPP 6172 Advanced Fungal Taxonomy-Fleshy Basidiomycetes: 2 hours.

    (Prerequisite: Consent of Instructor). One hour lecture. Two hours laboratory. Methods and practice in identification of taxon-basidiomycetes in different ecosystems.Includes conventional mascroscopic and microscopic techniques for identification compared with molecular methods

    EPP 6173 Medical and Veterinary Entomology: 3 hours.

    (Prerequisite:EPP 4154 or consent of instructor). Two hours lecture. Two hour laboratory. Exxentials of the biology, disease relationships, surveillance, and control of arthropods parastitic on humans and animals in the context of clincal and preventive medicine

    EPP 6182 Advanced Fungal Taxonomy-Oomycetes and Zygomycetes: 2 hours.

    (Prerequisites: Consent of Instructor ). One hour lecture. Two hour laboratory. Methods and practice in identification of taxon-oomycetes and zygomycetes in different ecosystems. Includes conventional macroscopic and microscopic techniques for identification compared with molecular methods

    EPP 6214 Diseases of Crops: 4 hours.

    (Prerequisites: EPP 3113 or 3124). Three hours lecture. Two hours laboratory. Fundamentals and practical aspects of identification and control of selected diseases of crop plants grown in the southern U.S. Spring semester

    EPP 6234 Field Crop Insects: 4 hours.

    (Prerequisite: EPP 2213 or 4154). Three hours lecture. Two hours laboratory. Fall semester. Recognition, biology, distribution, damage, economic importance and methods of control of insect pests of agronomic and horticultural crops

    EPP 6244 Aquatic Entomology: 4 hours.

    (Prerequisites: EPP 4154 or instructors approval). Three hours lecture. Two hours laboratory. Study of basic biological and ecological principles important to aquatic insects and related arthropods, including life histories, evolutionary adaptations, community and species and identification

    EPP 6254 Introduction to Mycology: 4 hours.

    (Prerequisite: BIO 1134 or consent of instructor). Two hours lecture. Four hours laboratory. Subjects include fungal structures, function and physiology, reproduction, genetics, emphasis in taxonomy and influence of reproductive stages of Ascomycetes, Basidiomycetes on plant and forest ecosystems

    EPP 6263 Principles of Insect Pest Management: 3 hours.

    Two hours lecture. Two hours laboratory. Discussion of pest management concepts, insect control methods, sampling, and pest management systems. Laboratory involves sampling, calibration and other exercises related to pest management

    EPP 6264 Advanced Mycology: 4 hours.

    (Prerequisite: BIO 1134 or consent of instructor). Two hours lecture. Four hours laboratory. Subjects include fungal structures, function and physiology, reproduction, genetics, and taxonomy of Oomycota, Chytridiomycota, and Zygomycota (Glomeromycota) and other phyla on plant and forest ecosystems

    EPP 6313 Forensic Entomology: 3 hours.

    Two hours lecture. Two hours laboratory. Introduction to the identification and ecology of insects and other arthropods associated with corpses/carrion and related materials in the context of forensic science

    EPP 6333 Principles of Insect Anatomy and Physiology: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 4154). Three hours lecture. Spring semester. Introduction to the basic principles of structure and function of insect organ systems from a comparative and evolutionary viewpoint

    EPP 6523 Turfgrass Diseases: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 3113 or 3124) Two hours lecture Three hours laboratory. Study of the life cycle, damage, economic importance and control startegies of turfgrass diseases

    EPP 6543 Toxicology and Insecticide Chemistry: 3 hours.

    (Prerequisite: Organic Chemistry). Two hours lecture. Two hours laboratory. Spring semester. Chemistry, toxicity and mode of action of major groups of insecticides. Laboratory bioassay methods, insecticide interactions, calculations

    EPP 6613 Forensic Entomology: 3 hours.

    Two hours lecture. Two hours Laboratory. Introduction to the identification and ecology of insects and other arthropods associated with corpses/carrion and related materials in the context of forensic science

    EPP 6990 Special Topics in Entomology and Plant Pathology: 1-9 hours.

    Credit and title to be arranged. This course is to be used on a limited basis to offer developing subject matter areas not covered in existing courses. (Courses limited to two offerings under one title within two academic years)

    EPP 7000 Directed Individual Study in Entomology and Plant Pathology: 1-6 hours.

    Hours and credits to be arranged

    EPP 8000 Thesis Research/ Thesis in Entomology and Plant Pathology: 1-13 hours.

    Thesis Research/Thesis. Hours and credits to be arranged

    EPP 8111 Seminar: 1 hour.

    Consideration of recent advances and problems in Entomology and Plant Pathology student participation, general discussion

    EPP 8113 Plant Nematology: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 3113). Two hours lecture. Three hours laboratory. Basic morphology, taxonomy, and nomenclature discussion of plant pathogenic general, symptomatology, methods of isolation, control methods, and interrelationship of nematodes to other plant pathogens. Fall semester, even years

    EPP 8121 Seminar: 1 hour.

    Consideration of recent advances and problems in Entomology and Plant Pathology student participation, general discussion

    EPP 8123 Plant Virology: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 4133/6133 or equivalent). Two hours lecture. Three hours laboratory. Morphology and structure of infectious entity characteristics of plant virus groups including symptomatology, transmission, vectors, etc. Methods of assay and purification. Spring semester, even years

    EPP 8133 Plant Bacteriology: 3 hours.

    (Prerequisite:EPP 4113,EPP 6133 or consent of instructor). Two hours lecture. Three hours Laboratory. Morphology, biology and taxonomy of plant-associated bacteria and physio-biochemical and molecular mechanisms involved in their interactions with plants development and management of plant bacterial diseases

    EPP 8143 Advanced Plant Pathology I: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 3113). Three hours lecture. The dynamic nature of disease. Genetics and variability of the major groups of plant pathogens. Epidemiology. Genetics of the host-parasitic interaction. Fall semesters

    EPP 8144 Transmission Electro Microscopy: 4 hours.

    (Prerequisite:Consent of Instructor). One hour lecture. Six hours laboratory. Introduction to TEM including life sciences (tissue) and engineering (crystalline materials) topics. (Same as ME 8144)

    EPP 8173 Clinical Plant Pathology: 3 hours.

    (Prerequisites: EPP 3113 and EPP 4114). Two four-hour laboratories. Clinical techniques, procedures, and experience in diagnosing plant diseases in the laboratory and field. Covers diseases caused by bacteria, fungi, MLO, nematodes, unfavorable environment and viruses. Summer

    EPP 8223 Scanning Electron Microscopy: 3 hours.

    (Prerequisite: Graduate Student, consent of instructor). Two hours lecture. Three hours laboratory . Fall semester. Introduction to scanning electron microscopy and associated techniques

    EPP 8253 Advanced Plant Pathology II: 3 hours.

    (Prerequisites: EPP 4113/6113, BIO 4214/6214, or consent of instructor). Three hours lecture. Infection processes, weapons utilized by pathogens in attack, and resultant alterations in ultrastructure, function and metabolism

    EPP 8263 Insect Rearing: Principles and Procedures: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 2213, EPP 4154, or instructor permission.) Two hours lecture. Two hours laboratory. Principles and procedures for hearing high quality insects including safety, genetics environments, diets, diet contamination, disease, and quality control

    EPP 8273 Empirical Research in Theory and Practice: 3 hours.

    Three hours lecture. Introduction to the nature, process, and societal role of research scientific method, experimental design, proposal writing, publishing, and ethics. Course emphasizes the intuitive understanding and practical application of quantitative analyses, including written, visual, and oral presentation of methods and results

    EPP 8333 Advanced Toxicology: 3 hours.

    (Prerequisite: EPP 4543. Three hours lecture. Fall semester. Physiological and biochemical actions of pesticides and therapeutic drugs. Pesticide metabolism and resistance. Insecticide synergism. Natural toxins and venoms. (Same as PHY 8333)

    EPP 8343 Advances in Insect Anatomy-Structure and Function: 3 hours.

    (Prerequisites: General entomology (EPP 4154/6154) and/ or Insect taxonomy (EPP 4164/6164) or consent of instructor). Three credit course for upper-level graduate students with basic background in entomology. Advances in knowledge of insect anatomy, functional morphology and terminology associated with it. Evolutionary aspects of insect form and function

    EPP 8353 Advances in Insect Physiology and Biochemistry: 3 hours.

    (Prerequisites: General entomology (EPP 4154/6154) and/ or Insect taxonomy (EPP 4164/6164) or consent of instructor). Three credits course for upper-level graduate students with basic background in entomology and biochemistry. This advanced course will examine the major biochemical and molecular bases of the processes and functions of insect systems

    EPP 8483 Ecological Genetics: 3 hours.

    (Prerequisites: PO 3103 or equivalent and BIO 4113/6113 or consent of instructor). Three hours lecture. Spring semester, odd-numbered years. Introduction to the application of genetic methods and theory to the study of adaptation in natural populations. (Same as GNS 8483)

    EPP 8990 Special Topics in Entomology and Plant Pathology: 1-9 hours.

    Credit and title to be arranged. This course is to be used on a limited basis to offer developing subject matter areas not covered in existing courses. (Courses limited to two offerings under one title within two academic years)

    EPP 9000 Dissertation Research /Dissertation in Entomology and Plant Pathology: 1-13 hours.

    Hours and credits to be arranged

    Mississippi State, MS 39762 | 662.325.2323
    © 2012 Mississippi State University. Alle Rechte vorbehalten.


    Schau das Video: Pflanze und Blüte Aufbau - einfach erklärt (August 2022).